目的 在以往研究者的基础上结合本课题组多次重复试验认真总结经验,拟探讨建立一套高效、稳定、活性好、纯度高的体外脊髓神经元原代培养方法。 方法 取E16D的SD大鼠的脊髓组织,剔除干净脊膜、血管膜后,用0.125%的胰酶联合DNA酶消化脊髓组织为单细胞悬浮液,边消化边收集单细胞直至脊髓组织消化完全,经差速贴壁后接种于含血清的培养基中,4小时后培养基换成Neurobasal无血清培养基,
目的 在以往研究者的基础上结合本课题组多次重复试验认真总结经验,拟探讨建立一套高效、稳定、活性好、纯度高的体外脊髓神经元原代培养方法。
方法 取E16D的SD大鼠的脊髓组织,剔除干净脊膜、血管膜后,用0.125%的胰酶联合DNA酶消化脊髓组织为单细胞悬浮液,边消化边收集单细胞直至脊髓组织消化完全,经差速贴壁后接种于含血清的培养基中,4小时后培养基换成Neurobasal无血清培养基,3天后用阿糖胞苷作用48小时,采用倒置显微镜观察神经元细胞形态;台盼蓝染色法检测细胞的存活率;NSE、TUBB3、DAPI免疫荧光双标对脊髓神经元进行鉴定。
结果 4h后大部分神经元都已贴壁,细胞呈圆形或椭圆形,胞体均匀透亮,周围可见光晕,少数神经元长出小突起;1 d后超过半数神经元长出短小的突起,细胞形态慢慢变得不规则,培养基内可见悬浮未贴壁的死亡细胞和碎片;3d后神经元胞体逐渐变得肥大饱满呈三角形、梭性或椭圆形等,突起变长,同时可见少量胶质细胞;5d后细胞数量稳定,胞体饱满,胞质均匀,立体感强,周围光晕明显,突起进一步伸长,细胞密度较高的区域邻近细胞相互形成连接,胶质细胞明显减少;脊髓神经细胞生长状态良好,存活率高,存活率为(97.74%±0.88%),NSE、TUBB3、DAPI均阳性细胞所占比例大,神经元纯度为(95.63%±1.74%),多次重复实验间没有统计学差异(P﹥0.05)。
结论 该研究从脊髓神经元原代培养的各个方面做了系统改进和说明,培养出了纯度高、活性好、状态佳的脊髓神经元细胞。
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