表皮干细胞向汗腺细胞分化的表型改变及其通路机制研究
近期，解放军总医院第一附属医院烧伤整形科研究人员发表论文，旨在探讨表皮干细胞（epidermalstemcells，ESCs）诱导分化为汗腺细胞（sweatglandcells，SGCs）过程中表型的改变及其通路的调控机制。研究指出，处于SGCs生长环境中时，通过Transwell共培养系统共培养，ESCs可经诱导分化为SGCs，其表型发生相应改变；通过对丝裂原活化蛋白激酶/ERK通路的控制
近期，解放军总医院第一附属医院烧伤整形科研究人员发表论文，旨在探讨表皮干细胞（epidermal stem cells，ESCs）诱导分化为汗腺细胞（sweat gland cells，SGCs）过程中表型的改变及其通路的调控机制。研究指出，处于SGCs生长环境中时，通过Transwell共培养系统共培养，ESCs可经诱导分化为SGCs，其表型发生相应改变；通过对丝裂原活化蛋白激酶/ERK通路的控制，可以调节ESCs的分化方向和程度。该文发表在2016年第02期《中国修复重建外科杂志》上。
取健康成人包皮，采用中性蛋白酶消化后高浓度Ⅳ型胶原黏附法分离培养获得ESCs，行β1整合素、角蛋白19（cytokeratin 19，CK19）及p63免疫荧光染色法鉴定；取健康成人全层皮肤，采用Ⅱ型胶原酶消化法分离提取汗腺组织，体外增殖培养SGCs，行CK7、CK18、CK19和癌胚抗原（carcinoembryonic antigen，CEA）免疫荧光法鉴定。取第2代ESCs分为4组：A组将ESCs及SGCs两种细胞通过Ttranswell共培养系统共培养，B组通过单纯添加汗腺上清液培养ESCs，C组在A组基础上加入浓度为60 ng/mL的EGF，D组在A组基础上加入浓度为10 mmol/L的PD98059。分别通过倒置相差显微镜进行细胞形态学观察、流式细胞术检测ESCs表型阳性率及Western blot检测分化过程中的信号通路机制。
结果显示， 经细胞形态学观察及免疫荧光染色鉴定提示培养细胞为ESCs和SGCs。倒置相差显微镜观察示，A、C、D组培养后细胞形态变化相似，9 d后细胞开始出现扁平多角形结构改变；B组形态变化较慢培养12 d后与其他3组结构相似。流式细胞术结果示，与B组比较，A组Transwell共培养系统共培养后，ESCs的β1整合素阳性率显著下调、CEA阳性率显著上调（P<0.05）；C组加入EGF可降低共培养系统中ESCs的β1整合素下调和CEA上调，D组加入PD98059可增强共培养系统中ESCs的β1整合素下调和CEA上调，A、C、D组间比较差异均有统计学意义（P<0.05）。Western blot检测示，4组均有较高水平细胞外信号调节激酶（extracellular signal regulated kinase，ERK）表达，但B组明显低于其他3组（P<0.05）；磷酸化-ERK表达A组最高、C组最低，各组间比较差异均有统计学意义（P<0.05）。
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